細胞免疫熒光：細胞種板與細胞爬片制備：1) 細胞密度在90%-95%左右，用預熱胰酶消化細胞后重懸細胞于完全培養基中，充分吹打，使之成單細胞懸液，計數。2)取細胞培養12孔板，在每個孔放爬片的位置根據爬片的大小，先在每個孔里準備放爬片的位置滴幾滴培養基，然后將爬片置于液滴上，壓緊，使爬片與培養皿靠培養基的張力粘合到一起，防止加細胞懸液時爬片漂起，造成雙層細胞貼片。根據自己的需要選擇合適的細胞密度種入12孔板培養板內。3)24h或者48h后，根據細胞生長速度快慢，觀察判斷細胞密度，約90%時進行細胞免疫熒光。免疫熒光技術可以用于研究內臟移植和免疫抑制。LY6G免疫熒光分析

免疫熒光間接法測抗體實驗注意事項：1）熒光染色后一般在1h內完成觀察，或于4℃保存4h，時間過長，會使熒光減弱。2）每次試驗時，需設置以下三種對照：①陽性對照：陽性血清+熒光標記物②陰性對照：陰性血清+熒光標記物③熒光標記物對照：PBS+熒光標記物3.已知抗原標本片需在操作的各個步驟中，始終保持濕潤，避免干燥。4.所滴加的待檢抗體標本或熒光標記物，應始終保持在已知抗原標本片上，避免因放置不平使液體流失，從而造成非特異性熒光染色。Aggrecan免疫組化IHC免疫熒光技術可以通過熒光顯微鏡觀察樣品中的熒光信號，從而確定目標分子的存在和位置。

直接免疫熒光：單抗體（一抗）用于免疫染色和檢測目標蛋白。熒光素結合的一抗直接與目標抗原結合，并使用成像顯微鏡觀察。直接免疫熒光的優點：由于無需為兩種抗體選擇不同的物種反應性，從而降低了物種交叉反應性問題。與間接免疫熒光相比，時間縮短（操作步驟減少）。直接免疫熒光的缺點：不允許通過二抗進行信號放大；檢測靈敏度降低；熒光素結合一抗的選擇有限；與使用熒光二抗的檢測相比，更昂貴。間接免疫熒光：使用兩種抗體（一抗和二抗）進行免疫染色并檢測目標蛋白。首先，用特異性一抗標記目標蛋白。然后，熒光素結合的二抗（與一抗具有不同的物種反應性）識別結合的抗原-抗體復合物并與一抗結合。由于一個以上的二抗可以與一抗結合，熒光信號被放大，提供了更高的檢測靈敏度。

免疫熒光Coons等于1941年初次采用熒光素進行標記而獲得成功。這種以熒光物質標記抗體而進行抗原定位的技術稱為熒光抗體技術。用熒光抗體示蹤或檢查相應抗原的方法稱熒光抗體法；用已知的熒光抗原標記物示蹤或檢查相應抗體的方法稱熒光抗原法。這兩種方法總稱免疫熒光技術，因為熒光色素不但能與抗體球蛋白結合，用于檢測或定位各種抗原，也可以與其他蛋白質結合，用于檢測或定位抗體，但是在實際工作中熒光抗原技術很少應用，所以人們習慣稱為熒光抗體技術，或稱為免疫熒光技術。以熒光抗體方法較常用。用免疫熒光技術顯示和檢查細胞或組織內抗原或半抗原物質等方法稱為免疫熒光細胞（或組織）化學技術。免疫熒光技術可以用于研究環境污染和毒物作用。

免疫熒光應用范圍：其應用范圍極其普遍，可以測定內分泌、蛋白質、細胞因子、細胞表面抗原、多肽、核酸、受體、神經遞質、肉瘤標志物、血藥濃度等各種生物活性物質。根據診斷類別，又可分為傳染性疾病、內分泌、藥物檢測、免疫學、血型鑒定等。免疫熒光實驗步驟：洗滌：PBS洗滌5min*3次。封閉：使用封閉液對樣本進行封閉，一般1h。加一抗：使用合適濃度的一抗與樣本4℃過夜。洗滌：PBS或PBST洗滌5min*3次。加二抗：使用間接法時需要加二抗處理，根據說明書使用合適的濃度，避光處理1h（后面步驟均需避光）。洗滌：PBS或PBST洗滌5min*3次。封片：滴一滴防淬滅劑，封片。可立即觀察后暫存4℃盡快觀察。免疫熒光技術可以用于研究肉瘤的發生和發展過程。SERPINF1免疫熒光染色

免疫熒光技術可以用于研究神經系統的功能和疾病。LY6G免疫熒光分析

免疫熒光實驗的注意事項：對熒光標記的抗體的稀釋，要保證抗體的蛋白有一定的濃度，一般稀釋度不應超過1：20，抗體濃度過低，會導致產生的熒光過弱，影響結果的觀察。染色的溫度和時間需要根據各種不同的標本及抗原而變化，染色時間可以從10min到數小時，一般30min已足夠。染色溫度多采用室溫（25℃左右），高于37℃可加強染色效果，但對不耐熱的抗原（如流行性乙型腦炎病毒）可采用0-2℃的低溫，延長染色時間。低溫染色過夜較37℃30min效果好的多。LY6G免疫熒光分析

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