細胞轉染之PEI 轉染法：1.細胞分盤：通過胰酶消化收集細胞，用適當的完全培養基以 1×105 至 4×105細胞/cm2 的密度平鋪細胞于 35 mm 培養皿上（根據實驗需要選擇培養皿，使細胞貼壁后所占面積達到培養皿總面積的 70－90％）。將細胞置于含 5％CO2 的 37℃溫箱中孵育 8-24 h，當細胞貼壁完全后即可開始轉染。轉染前 2 h 換液（用 1.5 ml 無血清培養基置換舊的培養基）。注：PEI轉染法對細胞生長有克制作用，在換液前細胞幾乎不生長，所以需要密度比較大時做轉染。2.制備PEI-DNA 混合物以 35 mm 組織培養皿用 240 μl 反應總體積為例。先在無菌EP管中加入120 μl 1×HBS,再加入質粒 DNA（總量 1-3 μg 為佳），混勻后加入等體積 PEI工作液，充分混勻后室溫靜置 20-30 min ，較后將這 240 μl 的PEI-DNA混合液逐滴加入上述單層細胞的細胞培養基中，輕輕搖動平皿混勻后置于含 5％ CO2的 37℃溫箱孵育。果觀察到轉染效率降低，可以試著轉染新鮮培養的細胞以恢復較佳結果。珠海細胞高效轉染試劑直銷價

如何有效提高細胞轉染實驗效率：1.選擇高效的轉染方法不同轉染試劑有不同的轉染方法，但大多大同小異。轉染時應跟據具體轉染試劑推薦的方法，但也要注意，因不同實驗室培養的細胞性質不同，質粒定量差異，操作手法上的差異等，其轉染效果可能不同，應根據實驗室的具體條件來確定較佳轉染條件。2.確保所構建載體的質量。轉染載體的構建（細菌載體，質粒DNA，RNA，PCR產物，寡核苷酸等）也影響轉染結果。細菌載體對特定宿主細胞傳染效率較高，但不同細菌載體有其特定的宿主，有的還要求特定的細胞周期，如逆轉錄細菌需侵染分裂期的宿主細胞，此外還需考慮一些安全問題（如基因污染）。除載體構建外，載體的形態及大小對轉染效率也有不同的影響，如前面提到的超螺旋及線性DNA對瞬時和穩定轉染的影響。如果基因產物對細胞有毒性作用，轉染也很難進行，因此選擇組成或可調控，強度合適的啟動子也很重要，同時做空載體及其它基因的相同載體構建的轉染正對照可排除毒性影響的干擾。開封細胞高效轉染試劑直銷廠家瞬時表達分析檢測未重組質粒DNA上基因的表達。

細胞轉染效率低下的幾個大坑：1.準備不足做脂質體轉染的時候，在開展正式實驗前要多做預試驗，優化轉染條件。優化轉染條件包括：脂質體的用量、DNA密度、細胞密度、脂質體和DNA混合孵育時間等等。2.電壓過大做電轉的時候，如果電壓太大，往往會發生細胞大量死亡的情況。不同的細胞，需要的電壓是不一樣的。這就要求我們多做預實驗，多摸索條件。對于大多數細胞來說，其較佳電壓位于250-1250v/cm。另外，就是進行轉染的細胞應該處于對數生長期。處于對數生長期的細胞的抗損傷能力是較強的。細胞濃度應該處于5x106到1x107／mL之間。每次轉染的質粒應該控制在4-6 μg，如果﹥10μg，轉染效率也較大降低。電擊后，應該將DNA和細胞混合液在室溫下放置10分鐘，使細胞恢復損傷。

細胞轉染的常用方法：細菌轉染：原理：對于用脂質體不能實現轉染的細胞，可以采用細菌轉染。可用于蛋白質過表達或克制，是臨床研究中較常用的方法。它通過侵染宿主細胞將外源基因整合到染色體中，可用于難轉染細胞、原代細胞的穩定性轉染。實驗步驟：通過基因克隆生成重組細菌 → 采用非細菌法轉染包裝細胞系，擴增并分離得到重組細菌顆粒→純化并滴定細菌液→轉導目的細胞（含有細菌特異性的受體）→去除培養物中的細菌，并加入新鮮培養基→分析細胞瞬時基因表達或沉默情況。通過緩沖液的作用以及脂質與內體膜融合，增大內體的內部滲透壓。

細胞電轉染實驗的幾點建議：1. 電場強度要合適合適的電場強度對于電轉染實驗非常重要，電場強度不能過高，過高會增加細胞的死亡率；也不能過低，過低不能增加膜的通透性或在膜上形成小孔。不同細胞系具有不同的較佳場強值，實驗前應測定所轉染細胞系的較佳電場強度。2. 細胞狀態要好用于電轉的細胞一般選取處于對數生長期的細胞（15代以內，傳代后2d）。因為處于對數生長期的細胞分裂旺盛，表面結構致密比穩定期的細胞差，電轉后，細胞膜的恢復能力強，而且處于有絲分裂期的細胞更容易接受外源DNA.一類是瞬時轉染，一類是穩定轉染（很長轉染）。鄭州正規細胞高效轉染試劑廠家批發價

必須通過對藥物的抗性篩選進行擴增或通過表型變化進行鑒定。珠海細胞高效轉染試劑直銷價

如何高效率實現細胞轉染：陽離子脂質體轉染試劑脂質轉染試劑，以其適用宿主范圍廣，操作簡便，對細胞毒性小，轉染效率高受到研究者們的青睞。脂質體（liposome）是一種人工膜，在水相中形成具有雙分子層結構的球形封閉囊泡。脂質體可以和帶負電荷的核酸結合后重新形成復合物，當復合物接近細胞膜時，通過內吞作用形成內體（endosomes）進入細胞，通過緩沖液的作用以及脂質與內體膜融合，增大內體的內部滲透壓，使內體結構破壞，釋放出核酸。隨后DNA復合物被釋放進入細胞核內。對于普通細胞系，一般的瞬時轉染方法多采用脂質體法。利用脂質體轉染法較重要的就是防止其毒性，因此脂質體與質粒的比例，細胞密度以及轉染的時間長短和培養基中血清的含量都是影響轉染效率的重要因素，通過實驗優化合適的轉染條件對于轉染效率的提高很重要。珠海細胞高效轉染試劑直銷價

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