DNA提取鑒定方法：分光光度法：在260nm和280nm處測定DNA溶液的光吸收，A260與A280之比應在1.75-1.80之間。低于此值表明制備物中殘留蛋白質成分較高或含有酚，高于此值表明有RNA的殘留。凝膠電泳分析：影響瓊脂糖凝膠電泳DNA遷移率的因素：①DNA分子大小，DNA分子越大遷移速度越慢。②遷移率與瓊脂糖濃度成反比。③DNA構象：a.相同分子量的超螺旋環狀（Ⅰ型），切口環狀（Ⅱ型），線狀（Ⅲ型）DNA，以不同速率通過凝膠。b.一般情況下，遷移率Ⅰ型>Ⅲ型>Ⅱ型。④電壓：遷移率與所加電壓成正比，但是電壓過大有效分離范圍減小。⑤電場方向：單一方向速率均等，改變方向，極大分子DNA遷移更慢。通過脈沖電場凝膠電泳分離極大DNA。DNA提取的樣品準備之生物組織：液氮冷凍敲碎研磨。無錫離心柱法RNA提取可測序

DNA提取試劑盒的保存方式：室溫。低溫保存可能會有沉淀析出。如果發生析出現象，請于50℃溶解后，再于室溫保存。DNA提取試劑盒主要可以分為以下幾大類：小量全血基因組DNA提取試劑盒、中量全血基因組DNA提取試劑盒、組織/細胞基因組DNA提取試劑盒、中量/大量組織/細胞基因組DNA提取試劑盒、全血/組織/細胞基因組DNA提取試劑盒、CTAB植物基因DNA提取試劑盒、新型植物基因組DNA提取試劑盒、酵母基因組DNA提取試劑盒、M13噬菌體單鏈基因組DNA提取試劑盒。蘇州離心柱法RNA提取企業DNA提取主要是CTAB方法，其他的方法還有物理方式如玻璃珠法、超聲波法、研磨法、凍融法。

骨組織RNA提取之其它骨組織破碎方法：立刻將混合物(每次小于720μl，多可以分兩次加入)加入一個吸附柱RA中，（吸附柱放入收集管中）13,000rpm離心2分鐘，棄掉廢液。確保離心后液體全部濾過去，膜上沒有殘留，如有必要，可以加大離心力和離心時間。加700μl去蛋白液RW1，室溫放置1分鐘，13,000rpm離心30秒，棄掉廢液。加入500μl漂洗液RW（請先檢查是否已加入無水乙醇!），13,000rpm離心30秒，棄掉廢液。加入500μl漂洗液RW，重復一遍。將吸附柱RA放回空收集管中，13,000rpm離心2分鐘，盡量除去漂洗液,以免漂洗液中殘留乙醇抑制下游反應。

血漿DNA與血漿游離DNA提取試劑的選擇方法：血清血漿的量與DNA提取的核酸量成正比。因而，如果要提高核酸得率，可通過增加血清或血漿的量來實現。一般地，做血漿或血清核酸提取，樣本量較好在1ml以上。如果1ml或更大量樣本得不到滿意的檢測結果，則應及時考慮更換提取試劑盒。操作簡便性也是血漿DNA提取試劑選擇的一個重要因素。操作過于復雜，不只費時費力，還容易導致樣本間的交叉污染，也容易損失樣本。特別是用于臨床檢測或樣本較多情況下的檢測，操作復雜如果導致交叉污染會引起誤診，還會影響出檢測報告的時間。因而，選用操作簡便、流暢的提取試劑盒非常重要。RNA提取通常用于研究基因表達或RNA的功能。

血漿DNA與血漿游離DNA提取試劑的選擇方法：游離DNA提取方法一般有TRizol方法、離心柱法、磁珠法。其中，Trizol方法與離心柱相比，提取效果相當，但是因其對操作者帶來的毒性，現在越來越被棄用。磁珠法比較適合機器自動化提取，如果沒有核酸提取儀，只是使用磁力架配套提取，磁珠法的操作就比較麻煩且容易導致樣本交叉污染。另外，根據研究，磁珠法的核酸提取得率不如離心柱法。如果要提取的游離核酸的量比較低，較好選擇離心柱法。對于游離DNA含量較低的樣本或比較珍貴的樣本或樣本總數不是很多的實驗室，頭選的核酸提取方法應是離心柱法。離心柱法游離DNA提取原理主要是樣本裂解后，游離DNA在高鹽條件下與硅膠膜結合，再在低鹽、高PH值時將DNA從硅膠膜上洗脫下來。RNA提取可以用于研究RNA的降解和穩定性。無錫離心柱法RNA提取可測序

RNA提取后可以進行反轉錄和PCR擴增。無錫離心柱法RNA提取可測序

RNA提取和DNA提取實驗中常見問題及過程中的注意事項：降解：降解問題是RNA制備中常常到的問題。因為在RNA提取過程中，樣品儲存不當或裂解效率低等情況都會導致降解。對于DNA提取，降解不是一個大問題，因為對于PCR，DNA可以被剪切并且工作正常，如果不希望有較多剪切的DNA，可以使用弱裂解的方法。PCR清理時的注意事項：PCR凈化其實并不是DNA提取技術本身，但它是一種效率高且簡單的技術，它只是添加高濃度的結合鹽（通常每體積PCR反應3-5體積鹽）和離心來過濾。在實驗過程中，PCRClean-up試劑盒出現故障也會導致整個實驗功虧一簣。因為在PCR反應中有較多吸收260度紫外線的物質，比如：核苷酸、去污劑、鹽和引物。所以，PCR凈化試劑盒經常無法正常工作可能是由于PCR反應失敗所造一般成較難清理。無錫離心柱法RNA提取可測序

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