外泌體的提取主要包括以下幾種方式：一是色譜法，這種方法分離到的外泌體在電鏡下大小均一，但是需要特殊的設備，應用不普遍。二是微流控分離法，該方法通過負壓及震蕩等機械原理分離外泌體，產量純度均具有較大幅度提高，但需要特定設備配合。外泌體分離方法之納米粒徑分析法：確定性橫向位移依賴于顆粒流動路徑的變化，而顆粒流動路徑取決于顆粒尺寸。這種方法雖然比較簡單，但是需要使用掃描電鏡技術、動態光散射技術、納米粒子跟蹤分析技術、單粒子干涉反射成像傳感器（SP-IRIS）技術等。對于外泌體大小、形態、外泌體的濃度、zeta電位等分析也可以使用粒度分析儀。外泌體與肺的關系密切，通過氣道和肺泡微環境的打開和修飾，參與肺疾病如肺結核、肺病等的發生和發展。濰坊組織提取外泌體

外泌體分離方法之尺寸排阻層析法：尺寸排阻層析法也被稱為凝膠過濾層析法，這種方法是基于凝膠孔的大小和外泌體的大小，大于凝膠孔徑的顆粒被洗脫；反之，小于凝膠孔徑的顆粒將被抑制。凝膠過濾層析分離法總體上能獲得較高的純度和產量。建議與超濾相結合，這種方法可提供更少的蛋白質污染和更高的外泌體回收率。凝膠過濾層析分離法的缺點是凝膠的成本過高。外泌體分離方法之聲學流體分離：聲學流體分離技術利用聲場根據粒子的大小、密度和可壓縮性來分離粒子。生物樣品在此過程中不會受到損壞，并且分離的本身是非接觸式、高效的和無標記的。佛山血漿外泌體穩定性好外泌體攜帶的小分子物質（如ATP、GTP等）參與細胞生命活動、代謝、細胞生長和分化等生物學進程。

外泌體的提取主要包括以下幾種方式。一是超速離心法，這是外泌體提取較常用的方法。此種方法得到的外泌體量多，但是純度不足，電鏡鑒定時發現外泌體聚集成塊，由于微泡和外泌體沒有非常統一的鑒定標準，也有一些研究認為此種方法得到的是微泡不是外泌體。二是過濾離心，這種操作簡單、省時，不影響外泌體的生物活性，但同樣存在純度不足的問題。三是密度梯度離心法，用此種方法分離到的外泌體純度高，但是前期準備工作繁雜，耗時，量少。

差速離心法分離外泌體的實驗原理：外泌體是一種小的(40-100nm)細胞外膜囊泡，目前進行外泌體分離的普遍方法是差速離心法。應用差速離心法和粒徑分析等是細胞外囊泡(EV)研究的重要步驟。已知細胞會分泌許多膜囊泡，這些囊泡的大小、分子含量及其形成機制各不相同具體取決于細胞的類型和當前狀態。通常可以辨別出三個主要的EV群體：凋亡小體、脫落的囊泡和外泌體.凋亡小體是已知較大的囊泡，直徑為800-5000nm，由凋亡后細胞的細胞質和質膜成分組成。脫落的囊泡和外泌體由非凋亡細胞釋放。脫落的囊泡，也稱為“胞外體”或有時稱為“微泡”，是由質膜起泡產生的，一般的粒徑尺寸范圍為(50–1000nm)。外泌體與細胞死亡形式相關，可以參與凋亡和壞死細胞的清理和處理過程。

外泌體的構成：外泌體富含膽固醇和鞘磷脂。2007年，Valadi等發現鼠的肥大細胞分泌的exosome可以被人的肥大細胞捕獲，并且其攜帶的mRNA成分可以進入細胞漿中可以被翻譯成蛋白質，不只是mRNA，exosomes所轉移的microRNA同樣具有生物活性，在進入靶細胞后可以靶向調節細胞中mRNA的水平。這一發現使得研究人員對exosome的研究熱情激增，截止已經通過286項研究發現了41860種蛋白質、2838種microRNA、3408種mRNA。一類外泌體中常見的細胞質蛋白是Rabs蛋白，是鳥苷酸三磷酸酶家族的一種。它可以調節外泌體膜與受體細胞的融合，有文獻報道稱RAB4,RAB5和RAB11主要出現于早期以及回收的核內體中，RAB7和RAB9主要出現于晚期的核內體。現有大量的研究發現外泌體中含有40種RAB蛋白。優化外泌體分離方法可以提高分離效率和分離精度。濰坊組織提取外泌體

外泌體可以通過非典型途徑進行排毒，參與細胞解掉毒和化學治著的作用。濰坊組織提取外泌體

外泌體的表征方法之非光學方法：非光學方法主要包括掃描電子顯微鏡（SEM）、透射電子顯微鏡（TEM）、冷凍電子顯微鏡（Cryo-EM）、原子力顯微鏡（AFM）、免疫檢測方法（ELISA）、傅立葉變換紅外光譜（FTIR）、可調諧電阻脈沖傳感(TRPS)和單粒子干涉反射成像傳感器(SP-IRIS)。SEM、TEM和AFM方法通常用于直接膜結構和形態測定，而ELISA檢測提供各種結構顆粒（主要是蛋白質和受體）的檢測和量化，例如，用于外泌體形態的確認。單粒子干涉反射成像傳感器(SP-IRIS)也用于外泌體定量，但也可用于檢測特定標記物和確定外泌體亞群。濰坊組織提取外泌體

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