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大連細胞外泌體

來源: 發布時間:2023-09-16

什么是外泌體?外泌體的作用。簡單來說,它就是我們皮膚肌底細胞的分泌物,但是這個分泌物是除了細胞核外,把其他所有的營養物質都能涵蓋,所以它是取之于人類細胞用之于人類細胞,成分安全。外泌體不是干細胞,是干細胞較精華的部分,生物**為了獲取外泌體囊泡,將臍帶間充質干細胞進行分離、純化、培養、增殖等一系列復雜先進工藝制備而成的外泌體混懸液,他是干細胞得以存活的精華,細胞是靠它生長的,**對干細胞的獲取很容易的,但外泌體就比較難了,全球醫學**都在為研究外泌體的醫學應用而付出努力,目前只有少數國家的細胞庫能夠成功獲取這一成果,其含有許多信號蛋白,核糖核酸,細胞生命DNA的密碼,一個細胞里95%是水,還有5%就是外泌體成分,其復雜特殊性比干細胞的培養時間長四五倍,精貴了一百倍他是干細胞的精華部分,保證了“干細胞”的所有功能并且具備干細胞未具備的功能———它能準時抵達指定位置及時準確治著替代衰老病變細胞。外泌體是一種具有細胞外信息傳遞功能的小囊泡。大連細胞外泌體

外泌體的表征方法之光學方法:目前,光學方法是外泌體表征的主要方法,即動態光散射(DLS)、多角度光散射(MALS)和納米粒子跟蹤分析(NTA)。這些方法允許對尺寸(DLS0.5–200nm;MALS10–500nm;NTA10–1000nm)、尺寸分布和濃度進行高分辨率測量。DLS和MALS的結合增加了測量范圍(0.5–500nm)和精度。光學方法比較受歡迎的,但缺點是靈敏度低、試劑消耗高以及需要昂貴的設備。在使用納米粒子跟蹤分析NTA方法過程中,熒光染料的加入也提高了分辨率,并允許通過使用熒光標記來表征表面免疫表型。從而確定標記物存在。細胞外泌體分離RNA提取分離前的細胞培養和收集條件也能對外泌體分離結果產生重要影響。

分離外泌體的方法之密度梯度超速離心:有助于根據尺寸、結構和形態差異分離和分析納米級材料。DGUC“細化”分離的囊泡,并使用密度為1.07g/mL或更低的密度梯度培養基。水中碘沙醇、冰冷的PBS和蔗糖是用于外泌體分離的常見梯度培養基。有市售的碘沙醇密度梯度分餾膜,用于將外泌體與非囊泡成分分離。將生物懸浮液添加到梯度培養基中,并以完整的梯度分層組分。DGUC有助于分離具有相同梯度的樣品。凋亡小體、蛋白質聚集體和其他非外泌體微囊泡可能通過超速離心干擾較終分離的外泌體產物。DGUC有助于克服超速離心的局限性,并提供較純凈的外泌體。DGUC在精細化和高性能外泌體分離方法中的應用。簡而言之,在分離細胞碎片后,應用1×105g用60%碘沙醇離心3小時,然后用1×10離心5用40%碘沙醇g18小時有助于形成多達12個碘沙醇梯度級分和兩個外泌體級分。超速離心使用連續的密度梯度或逐步梯度來較小化這些顆粒材料對外泌體的干擾。

外泌體分離方法之基于聚合物的沉淀法:基于聚合物的沉淀技術通常包括將生物流體與含聚合物的沉淀溶液混合、4℃孵育和低速離心。用于基于聚合物的沉淀的較常見聚合物之一是聚乙二醇(PEG)。這種聚合物的沉淀可以對分離的外泌體產生溫和影響而且可以產生中性的pH值。由此,出現了幾種常見的外泌體試劑盒:比如:SystemBiosciences,MountainView,CA,ExoQuick等。研究表明,使用ExoQuick方法可以快速執行,無需額外設備,只需用高速離心機進行超速離心可以獲得高產量的外泌體。但是此方法的缺點是:非外泌體材料對外泌體分離物的污染仍然是基于聚合物的分離方法的一個問題。此外,分離物中的聚合物可能會干擾下游分析。外泌體的分離純化有助于其后續研究,例如外泌體功能的解析等。

差速離心法分離外泌體的實驗原理:外泌體是一種小的(40-100nm)細胞外膜囊泡,目前進行外泌體分離的普遍方法是差速離心法。應用差速離心法和粒徑分析等是細胞外囊泡(EV)研究的重要步驟。已知細胞會分泌許多膜囊泡,這些囊泡的大小、分子含量及其形成機制各不相同具體取決于細胞的類型和當前狀態。通常可以辨別出三個主要的EV群體:凋亡小體、脫落的囊泡和外泌體.凋亡小體是已知較大的囊泡,直徑為800-5000nm,由凋亡后細胞的細胞質和質膜成分組成。脫落的囊泡和外泌體由非凋亡細胞釋放。脫落的囊泡,也稱為“胞外體”或有時稱為“微泡”,是由質膜起泡產生的,一般的粒徑尺寸范圍為(50–1000nm)。外泌體在心血管系統中扮演著重要的調節作用,與各種疾病如心肌梗死、心衰等相關聯。大連細胞外泌體

外泌體的分析需要根據不同來源的細胞選擇適宜的分離方法。大連細胞外泌體

分離外泌體的方法之微流控分離:基于微流體的外泌體分離可以包括用于外泌體捕獲的免疫親和方法,納米多孔膜篩分方法或微柱上的納米線用于外泌體捕獲。所有三個系統都需要具有粘彈性分析和電操作的芯片才能進行外泌體分離過程。外泌體的特異性很高,采用基于微流控芯片的免疫親和捕獲方法。尺寸范圍在40-100nm之間的外泌體被這種微流體芯片特異性地捕獲,在外泌體分離和定量方面的益處。篩分方法可用于通過壓力或通過電泳從全血中過濾外泌體,壓力的利用使分離時間更短,電場導致高外泌體純度。特異性、可重復性、低分離時間和更低的分離成本是基于微流體的外泌體分離的一些優點。大連細胞外泌體