經典的慢病毒載體（LV）的生產工藝如下，——三質粒系統瞬時轉染HEK293細胞系，轉染24小時后LV由轉染陽性細胞生產并排出到培養上清液中；收獲上清培養液后，加入核酸酶去除HCD污染，通過澄清步驟去除大的細胞碎片等雜質；下游純化步驟分離LV載體，純化方法包括切向流過濾TFF、色譜純化及超速離心；純化后的LV病毒顆粒經過無菌過濾，更換到優化后的配方中，灌裝并冷凍保存。每批Car-T生產時取對應量的LV病毒，切忌反復凍融，否則LV病毒會失活。在符合ISO13485:2016體系基礎上，增加了cGMP相應要求。四川500mM鹽濃度條件高鹽核酸酶

SAN HQ高鹽核酸酶發揮酶活性的條件比較廣。例如，該酶適宜的鹽濃度（NaCl）范圍是400mM-600mM，能耐受高達1M NaCl濃度。適宜反應溫度為25℃-37℃，能耐受4℃-38℃。Mg2+濃度大于1mM即可，在5-20mM范圍即可表現更高活性。跟全能核酸酶類似，SAN HQ高鹽核酸酶也是一款堿性核酸酶，其適宜pH為8.0-8.9，能耐受6.8-9.5。為了達到更高酶活性，可以通過調節pH實現。鑒于SAN HQ的耐受性，可以用于很多應用，如大規模生產、蛋白純化、蛋白組學等。黑龍江500mM鹽濃度條件高鹽核酸酶70921-202SAN HQ高鹽核酸酶有兩個級別，分別是生物工藝級別SAN HQ和GMP級別SAN HQ GMP。

相比傳統的Benzonase核酸酶，SAN HQ高鹽核酸酶的優勢是在400mM-600mM鹽濃度條件下具有適宜酶活性。在這個條件下，AAV病毒載體聚集更少、更加穩定；SAN HQ的使用能夠簡化生產工藝、降低酶用量及成本，不需額外脫鹽操作；AAV病毒載體得率更高，且HCD殘留更少、AAV產物更穩定。曲光教授在2005年發表的文章中，以AAV2為例探討了引起AAV病毒聚集的因素，并探索了AAV病毒純化和制劑過程中抑制聚集的方法。該文章通過篩選發現，高鹽濃度能夠抑制AAV病毒團聚，讓AAV病毒更加穩定，且高鹽濃度并不削弱AAV病毒的侵染活性。

ArcticZymes Technologies提供獨特特性的鹽活性核酸酶（Salt Active Nucleases，SANs）系列產品，主要包含SAN HQ高鹽核酸酶和M-SAN HQ中鹽核酸酶。這兩款酶都是非特異核酸內切酶，跟Benzonase一樣能高效降解任何形式（雙鏈、單鏈、線狀、環狀）的DNA和RNA；都來自于深海microbes，通過Pichia pastoris發酵生產得到。這兩款酶的區別在于發揮酶活的適宜鹽濃度不同，——M-SAN HQ中鹽核酸酶的適宜鹽濃度在175mM-250mM，而SAN HQ高鹽核酸酶的適宜鹽濃度在400mM-600mM。高鹽能夠抑制AAV病毒載體聚集，提高AAV病毒載體產量。

細胞基因藥物的基因遞送有病毒及非病毒兩種方式，其中病毒遞送更為常用。在病毒遞送路徑中，腺相關病毒（AAV）和慢病毒（Lentivirus）是常用的兩種載體；差別是病毒基因組的存在形式，AAV的基因組一般不整合到染色體中，以游離形式存在于染色體之外，且一般會表達數年之久；而慢病毒的基因組則會整合到染色體達到長期持續表達的目的。此外，其它用于基因藥物的病毒載體有單純皰疹病毒（HSV）、痘苗病毒（Vaccina Virus）、痘病毒（Poxviruses）。使用SAN HQ高鹽核酸酶可以更少的酶量獲得更高的去除率，對載體的產量和活性沒有任何負面影響；黑龍江高鹽核酸酶70921-150

SAN HQ高鹽核酸酶的改善效果與血清型無關。四川500mM鹽濃度條件高鹽核酸酶

一個美國客戶做了對照實驗，比較Benzonase和SAN HQ高鹽核酸酶純化病毒載體的效率。實驗設計如下，HEK293細胞轉染及培養后，分別取了150Million的293細胞進行裂解，分別在各自適宜的條件下（即SAN HQ組反應條件為500mM鹽濃度，而Benzonase組反應條件是150mM鹽濃度）加入等量的酶（0、2kU、3kU、4kU、5kU、6kU），37°孵育1hr，加入Picogreen染料后檢測DNA的殘留量。結果發現，SAN HQ高鹽核酸酶組用更少的酶得到了更好的去除效果（即2kU的SAN HQ消化結果明顯優于6kU的Benzonase），且SAN HQ的高純化效率是非血清型依賴的。四川500mM鹽濃度條件高鹽核酸酶