除了獲得載體的滴度及產量，生產慢病毒更關心的指標主要是各種污染物的去除。總DNA污染的去除百分比在99.1-99.84%，總蛋白污染物的去除百分比在99.85-99.9%。針對宿主細胞的DNA（HCD）及蛋白（HCP），有報道其去除百分比分別為99.8%和99.4%。因為不僅殘存的DNA可能是個問題，而且DNA的大小以及由此引起的可能轉移整個有功能的開放閱讀框也是問題，因此監(jiān)管機構對殘存DNA污染的分子量上限的要求越來越高。例如，F(xiàn)DA的指南‘生產用于傳染病適應癥的病毒疫苗的細胞基質和其他生物材料的特性和鑒定’中說明，殘留的細胞宿主的DNA片段不能超過一個功能基因的長度，估計在200bp左右。無錫中鹽核酸酶產品質量哪家好呢，歡迎咨詢上海倍篤生物 。重慶生理鹽條件中鹽核酸酶70950-160

M-SAN HQ中鹽核酸酶在生理鹽條件下的優(yōu)勢，讓其成為生物生產工藝中去除核酸污染的更好選擇。經過多年的市場宣傳，M-SAN HQ中鹽核酸酶品質已得到多個全球TOP CDMOs認可，納入其工藝開發(fā)篩選平臺。此外，目前全球有10+臨床項目涉及的病毒載體生產用到M-SAN HQ中鹽核酸酶。對于同一個項目，用M-SAN HQ替代Benzonase全能核酸酶，酶量減少、HCD去除效果更優(yōu)、病毒載體產量也有一定程度的提高，酶相關成本降為原有的1/5以內，極大降低了病毒載體生產成本。M-SAN HQ中鹽核酸酶70950-202宿主細胞DNA主要以染色質形態(tài)存在，其中組蛋白通過離子作用及疏水作用與DNA緊密結合；

慢病毒載體既可以轉導分裂細胞也可以轉導非分裂細胞，被認為是安全的，并且可以提供長期的轉基因表達，是目前較通用的基因轉移方法之一。因慢病毒載體能有效地轉導靶細胞，如造血干細胞和T細胞，在細胞和基因藥物中的應用越來越guang泛。源自人類胚胎腎細胞的HEK293細胞系是成熟的生產LV的系統(tǒng)，因為它們非常適合懸浮培養(yǎng)并且易于轉染。在無血清培養(yǎng)基中的懸浮培養(yǎng)在大規(guī)模生產中具有優(yōu)勢，因為它消除了批次之間的差異并降低了不定因子污染的風險。

Mayer等（2023）以measles virus(麻疹病毒，MV)為例，評估了四種不同核酸酶（BenzonaseTM、DeneraseTM、M-SAN HQ中鹽核酸酶及SAN HQ高鹽核酸酶）對于染色質DNA去除的效果。Vero細胞通過微載體貼壁培養(yǎng)來生產麻疹病毒MV，72h后收獲上清液，使用3μm cellulose filter(Sartorius)過濾后分裝多份，置于-80℃保存便于后續(xù)使用。在解凍后的上清中調節(jié)對應鹽濃度，并加入50 U/ml核酸酶，37℃孵育2hr進行消化，消化后留樣；將消化后上清液過Capto Core 700 (Cytiva)柱子，收集流穿液，之后洗雜、洗脫，并分別留樣。通過SDS-PAGE分析發(fā)現(xiàn)，相比Benzonase等傳統(tǒng)核酸酶，在生理鹽條件下M-SAN HQ中鹽核酸酶更高效將染色質DNA剪切成更小片段，甚至將核小體DNA剪切更徹底。M-SAN HQ中鹽核酸酶在生理鹽條件下具有更高活性，降解HCD效率更高，便于HCD的去除。

病毒載體作為細胞藥物生產的關鍵原材料，直接關系到細胞產品質量。載體質量的控制和工藝穩(wěn)定性和批間一致性都是關系到產品能否產業(yè)化的關鍵。在生產純化過程中，需要去除上游過程中的培養(yǎng)基成分、誘導劑、宿主蛋白和核酸等雜質，但是由于逆轉錄病毒顆粒比較大，高異質表面糖蛋白，而且活性易于受剪切影響，對下游純化提出了巨大的挑戰(zhàn)。目前病毒載體純化方法包括超速離心、離子交換層析、分子排阻層析、親和層析、滲濾等。各種方法各有利弊，就產業(yè)化而言，離子交換純化效果比較好，條件易于摸索，易于規(guī)模放大。M-SAN HQ ELISA kit檢測產品能定量檢測該核酸酶，與中鹽核酸酶搭配用在medicine生產。重慶生理鹽條件中鹽核酸酶70950-160

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在生物工藝流程中，需要使用核酸酶去除終產品中的核酸污染，而核酸酶作為外源成份，也需要在生產流程中去除。核酸酶去除工藝包括熱滅活法、酶抑制劑、離子交換和親合層析法等。慢病毒LV的pI在6.0-6.5左右，包裝了完整基因組DNA后的AAV病毒顆粒PI大致為5.9，來自于S.marcescens的全能核酸酶pI 6.85左右，M-SAN HQ中鹽核酸酶pI 8.7左右。因此，在同樣的條件下，從LV/AAV溶液中去除M-SAN HQ中鹽核酸酶比去除Benzonase全能核酸酶更容易、更徹底。重慶生理鹽條件中鹽核酸酶70950-160