范圍本方法適用于工業級氯化鋰中質量分數～。2原理用氫碘酸-次亞磷酸鈉-甲酸混合溶液溶解試料并還原硫化合物。在氮氣流下，硫化氫被氫氧化鈉-**溶液吸收，以雙硫腙作指示劑，用**標準滴定溶液滴定至溶液由黃色變為紅色。以消耗**標準滴定溶液的量計算硫化合物的含量。3試劑。：預先提純。，40g/L。：向還原劑提純裝置的三頸蒸餾瓶中加入50g次亞磷酸鈉、500mL氫碘酸（質量分數）和250mL甲酸（質量分數88%），每加入一種試劑均需混合。連接好裝置。接通冷卻水，在2～4個/min氣泡的速度通入氮氣下加熱回流煮沸4h以上，在氮氣流下冷卻至室溫，貯存于棕色玻璃瓶中，避免日光直接照射。，96?g/mL：稱取℃烘2h并在干燥器中冷卻至室溫的硫酸鉀（優級純），用水溶解后，移入1000mL容量瓶中，以水稀釋至刻度，混勻。此溶液1mL含96?g硫酸根。 以硝酸銀標準溶液滴定氯化物，用二級微商確定其反應終點，以消耗硝酸銀標準滴定溶液的量計算氯化鋰的含量。山東現代氯化鋰

目前鹵水提鋰的主要工藝有五種：沉淀法、吸附法、萃取法、煅燒浸取法、電滲析膜分離技術，藍科鋰業采用吸附法，是根據鹵水含鋰的特性而采用的技術，察爾汗鹽湖鋰資源開發優勢：（1）資源優勢：鹽湖股份鉀肥生產每年按產量500萬噸測算，每年排放老鹵量約有2億立方米/年，其鋰離子的濃度在200-250毫克左右，即每年排放的老鹵中鋰資源折合氯化鋰為20-30萬噸，該原料液為鋰產業發展提供了可靠的資源保障。（2）技術優勢：（3）成本優勢：豐富的鋰資源及鹽湖股份公司工業園區的公共設施，吸附提鋰技術碳酸鋰的生產成本相對同行具有相對優勢，也適合鋰產業大規模布局。 無水氯化鋰氯化鋰供應氯化鋰溶于25%（摩爾分數）甲醇一水混合溶劑中制成氯離子濃度在1mol/L以下的原液，也可用25%。

    4儀器設備原子吸收光譜儀，附鈣空心陰極燈。在儀器比較好工作條件下，凡能達到下列指標者均可使用。靈敏度：在與測定試液的基體相一致的溶液中，鈣的特征濃度應不大于。精密度：用比較高濃度的標準溶液測量10次吸光度，其標準偏差應不超過平均吸光度的；用比較低濃度的標準溶液(不是”零”標準溶液)測量10次吸光度，其標準偏差應不超過比較高濃度標準溶液平均吸光度的。工作曲線線性：將工作曲線按濃度等分成五段，比較高段的吸光度差值與比較低段的吸光度差值之比，應不小于。5操作步驟稱取，精確至。**地進行兩次測定，取其平均值。。隨同試料做空白試驗。，加入約5mL水，蓋上表面皿。加入1mL鹽酸（1+1）溶解，低溫加熱煮沸驅除二氧化碳，移入100mL容量瓶中，加入1mL鹽酸（1+1），以水稀釋至度混勻。（）分別置于50mL容量瓶中(控制試液吸光度A在)，依次加入0，，，()，各加入1mL5mg/mL鑭鹽溶溶液、5mL100g/L檸檬酸溶液，以水稀釋至刻度，混勻。

    冷卻時間RNA保持1μg/ml的恒定濃度，氯化鋰濃度為M。檢測的沉淀時間為0、?！鉉和25°C孵育，分別檢測沉淀時間和溫度。按前述方法制備樣本，并在4%PAGE-尿素凝膠上顯示。圖3顯示，沉淀時間為30分鐘時的沉淀效率高于立即離心；如泳道2與泳道3所示。盡管-20°C和25°C下沉淀30或60分鐘無差別(如泳道3-6所示)，但我們建議可以在-20°C下沉淀30分鐘，降低可能存在的RNA酶的活性。圖3.氯化鋰沉淀溫度的影響。泳道1：RNA分子量標準。泳道2：不冷卻立即離心的RNA。泳道3：離心前置于-20°C下冷卻30分鐘的RNA。泳道4：采用25°C下孵育30分鐘的RNA檢測沉淀時間。泳道5：20°C下冷卻1小時的RNA。泳道6：25°C下孵育1小時的RNA。離心時間樣本中RNA恒定濃度為1μg/ml，體積為50μl，氯化鋰濃度為M，4°C下以16,000xg離心、1、2、5、10和20分鐘。分別檢測含有放射性RNA的不同大小的轉錄物。圖4顯示離心時間是影響RNA回收的主要因素。4°C下以16,000xg離心20分鐘，定量回收50ng的RNA。泳道2-7顯示離心時間越短，回收率越低。圖4.離心時間對RNA沉淀的影響。泳道1：RNA分子量標準。泳道2：離心20分鐘的RNA；泳道3：10分鐘；泳道4：5分鐘；泳道5：2分鐘；泳道6：1分鐘；泳道7：30秒。典型溫度和質量濃度時氯化鋰水溶液表面濕空氣的相對濕度。

    利用LiCl沉淀純化RNALiCl常用于沉淀RNA，乙醇和單價陽離子(如鈉或銨離子)沉淀則使用更普遍。LiCl沉淀較其他RNA沉淀方法具有較大的優勢，其沉淀DNA、蛋白質或碳水化合物的效率更高(Barlowetal.,1963)。采用該方法可以去除RNA沉淀中的翻譯或cDNA合成***劑(Cathalaetal.,1983).。它還提供了一種簡單快速地回收體外轉錄反應中的RNA的方法。Ambion在其MEGAscript和mMESSAGEmMACHINE大規模體外轉錄試劑盒中采用LiCl作為RNA回收試劑。但我們通過提供電話技術服務，發現許多用戶不愿意使用LiCl，很可能是由于沒有描述其特性的文獻數據。我們對LiCl的使用進行了系統性研究，發現它是一種極為高效的RNA沉淀方法，特別是從體外轉錄反應中沉淀RNA。我們研究的三個主要變量是：(a)沉淀形成的溫度(b)RNA和氯化鋰的濃度(c)收集沉淀RNA的離心時間和速度。下面探討了上述所有變量。我們發現采用LiCl沉淀的RNA樣本，無需進一步純化，即可用于雜交和體外翻譯反應。據報道，由于氯離子的***作用，氯化鋰不適用于無細胞翻譯(Maniatis,etal.,1989)；但我們尚不能確定其在翻譯或顯微注射實驗中存在任何有害作用。其他優點在于鋰沉淀可以有效去除未結合的NTP，從而提高了紫外分光光度計定量的準確性。氯化鋰都用在哪些行業？貴州氯化鋰晶格

在沒有顏色的火焰中投入鋰或者氯化鋰,可以看到非常美麗的紅色火焰。山東現代氯化鋰

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