在生物工藝流程中，需要使用核酸酶去除終產品中的核酸污染，而核酸酶作為外源成份，也需要在生產流程中去除。核酸酶去除工藝包括熱滅活法、酶抑制劑、離子交換和親合層析法等。AAV衣殼亞種之間因表面電荷的差異導致不同的的等電點，——空衣殼pI在6.3左右，包裝了完整基因組DNA后的病毒顆粒pI大致為5.9。而來自于S.marcescens的全能核酸酶pI 6.85左右，SAN HQ高鹽核酸酶pI 9.6左右。因此，在同樣的條件下，從AAV溶液中去除SAN HQ高鹽核酸酶比去除Benzonase全能核酸酶更容易、更徹底。SAN HQ應用于生產工藝流程中，有效去除核酸污染；截止目前，已用于全球20+臨床項目中。山東SAN HQ高鹽核酸酶

桿狀病毒表達載體體系Baculovirus/Sf9(Baculovirusexpression vector，BEV)，是應用桿狀病毒表達載體(BEV)系統infect昆蟲細胞Sf9，是一種替代哺乳動物包裝細胞系的生產方案。整個系統包含兩種BEV，其中一個BEV攜帶兩側有ITRs的目的基因，另一BEV則攜帶rep/cap基因。這兩種BEV同時infectSf9即可組裝AAV。由于桿狀病毒具有輔助功能，因此BEV系統與可以穩定表達rep的Sf9細胞相結合，可用于靈活的、高滴度的大規模載體生產。BEV體系安全性好,infection效率高,生產工藝較之sTT更易放大，有更高的體積生產率優勢。遼寧500mM鹽濃度條件高鹽核酸酶70921-202SAN HQ高鹽核酸酶在高鹽濃度下活性更適，DNA去除效率更高。

基因藥物常用的AAV載體有三種生產方法，分別是三質粒瞬轉體系、桿狀病毒表達載體體系和包裝細胞體系。其中，20多年前開發的三質粒瞬轉表達技術仍然占據腺相關病毒AAV生產的主流地位，其三質粒分別是Helper質粒（含E2a/b、E4和VARNA基因）、目標基因表達質粒及輔助質粒（含Cap和Rep基因）。雖然AAV病毒載體的血清型不同，但AAV的生產流程基本一致，主要有質粒共轉宿主細胞HEK293、293細胞生產病毒顆粒、從細胞培養上清或/及細胞裂解液中收獲病毒載體、純化/制劑/無菌過濾/灌裝等流程。

殘留的宿主DNA是生產中產生的雜質，其存在潛在的致瘤性、傳染性和免疫原性等風險。相關研究表明，基因的大小普遍在200bp以上，因此大于200bp有可能會有一定的致病性，而且殘留DNA片段越大，生物制品的風險等級越高。因此，各國監管機構對其提出了嚴格要求。美國食品藥品監督管理局（FDA）在《關于人類基因zhiliao新產品生產指導文件》中明確指出HCD的片段要小于200bp。2022年5月，國家藥品監督管理局藥品評審中心（CDE）發布的《體內基因藥物產品藥學研究與評價技術指導原則（試行）》中也明確指出需對DNA殘留量和殘留片段大小進行控制，建議盡量將DNA殘留片段的大小控制在200bp以下。SAN HQ高鹽核酸酶有兩個級別，分別是生物工藝級別SAN HQ和GMP級別SAN HQ GMP。

一個美國客戶做了對照實驗，比較Benzonase和SAN HQ高鹽核酸酶純化病毒載體的效率。實驗設計如下，HEK293細胞轉染及培養后，分別取了150Million的293細胞進行裂解，分別在各自適宜的條件下（即SAN HQ組反應條件為500mM鹽濃度，而Benzonase組反應條件是150mM鹽濃度）加入等量的酶（0、2kU、3kU、4kU、5kU、6kU），37°孵育1hr，加入Picogreen染料后檢測DNA的殘留量。結果發現，SAN HQ高鹽核酸酶組用更少的酶得到了更好的去除效果（即2kU的SAN HQ消化結果明顯優于6kU的Benzonase），且SAN HQ的高純化效率是非血清型依賴的。GMP級別SAN HQ提供了更多的監管保證。上海SAN HQ TF高鹽核酸酶

SAN HQ高鹽核酸酶促進殘留DNA的消化，有助于符合FDA要求。山東SAN HQ高鹽核酸酶

ArcticZymes Technologies產品大都來源于深海microbes中，具有一些共同的特性。1. 熱不穩定性，使酶產品相對容易失活，簡化工作流程，方便自動化過程；2. 低溫活性，即在低溫或常溫下具有更高活性，縮短酶與底物的孵育時間，提高反應速度及效率；3. 耐鹽特性，是指大部分酶產品能耐受較高的鹽濃度，拓寬反應體系范圍選擇，在特殊體系的應用場景下具有更為出色的性能表現；4. 獨特特性，極限酶類產品能夠在非常規條件下進行酶促反應，讓一些反應從不可能變為可能。山東SAN HQ高鹽核酸酶